阐释细胞膜CsA干预下长时间耐力运动对大鼠Ceolin-3及相关指标影响

论文导读：化恢复到安静时水平。与CK相比，LDH恢复的更慢，反映损伤的时间更长。5.长时间耐力运动、CsA干预与二者协同作用都能够造成不同纤维类型肌肉中Ceopn-3含量的降低，影响Ceopn-3介导的信号通路。CsA比较目鱼肌为代表的慢肌纤维的影响较以趾长伸肌为代表的快肌纤维的影响更为显著。关键词：耐力运动论文小窝
摘要：探讨目的：在CsA干预条件下，长时间大强度的耐力运动对细胞膜ceopn-3含量的影响情况。结合一些生化指标和细胞内离子浓度的变化，探讨ceopn-3在耐力运动中参与对运动引起细胞蛋白代谢、对细胞信号通路的影响及ceopn-3自身变化机制，为耐力运动造成的细胞结构的变化以及所引起的疲劳快速恢复提供论述依据。探讨策略：探讨对象选用6周龄大的SD雄性大鼠40只，随机分成安静组（C）、耐力训练组（T）、环孢霉素组（S）和环孢霉素训练组（ST），每组10只。适应性训练两周后，以28m/s，10°坡度，每天训练1小时，每周休息1天的强度训练13周，11-13周ST组和S组注射CsA。腹主动脉取血，取腓肠肌、比目鱼肌、趾长伸肌。免疫组化法测Ceopn-3含量；荧光指示法测定Ca~(2+)；采取速率法测定血液中CK、LDH及组织LDH的含量；硝酸还原酶法测定组织中NO、NOS的含量。实验结果：（1）长时间大强度运动后，环孢霉素组（S）大鼠细胞内Ca~(2+)浓度与安静组（C）相比无显著性差别（p0.05）；耐力训练组（T）极其显著高于安静组（C）（p0.01）；环孢霉素耐力训练组（ST）显著高于安静组（C）（p0.05）。（2）NO测试结果为：环孢霉素组（S）显著高于安静组（C）（p0.05）；耐力训练组（T）与安静对照组（C）相比，无显著性差别（p0.05）；环孢霉素耐力训练组（ST）极其显著高于安静组（C）（p0.01），显著高于运动对照组（p0.05）。（3）总NOS测得结果为：环孢霉素组（S）与安静组（C）相比，TNOS含量极其显著增高（p0.01）；耐力训练组（T）与安静组（C）相比，TONS含量显著升高（p0.05）；环孢耐力训练组（ST）与安静组（C）相比，无显著性差别（p0.05）。（4）CK测试结果：各组间无显著性差别（p0.05）。（5）血液中LDH测试结果为环孢霉素组显著高于安静组（p0.05）；其它组间相比无显著性差别（p0.05）。组织中测试结果为：各组间无显著性差别（p0.05）。（6）Ceopn-3的测试结果显示：趾长伸肌中的含量由高到低的顺序为C组、ST组、T组、S组；比目鱼肌中的含量由高到低顺序为C组、T组、S组、ST组。实验结论：1.环孢霉素A会造成骨骼肌细胞膜的损伤。2.长时间耐力运动后细胞内Ca~(2+)浓度上升，单独CsA干预对胞浆Ca~(2+)浓度变化影响不大。耐力运动与CsA共同作用下，细胞内Ca~(2+)浓度上升。耐力运动干预条件对胞浆内Ca~(2+)浓度的影响显著高于CsA干预条件。3.CsA干预条件下，骨骼肌组织中NOS与NO变化一致，都会升高。耐力训练下，肌组织中NOS会升高，NO的生成受到影响。CsA与耐力运动共同影响下，NOS变化不显著，NO含量增加。4.CsA干预下，组织中LDH含量上升，CK变化恢复到安静时水平。与CK相比，LDH恢复的更慢，反映损伤的时间更长。5.长时间耐力运动、CsA干预与二者协同作用都能够造成不同纤维类型肌肉中Ceopn-3含量的降低，影响Ceopn-3介导的信号通路。CsA比较目鱼肌为代表的慢肌纤维的影响较以趾长伸肌为代表的快肌纤维的影响更为显著。关键词：耐力运动论文小窝蛋白-3论文细胞膜论文环孢霉素A论文
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Abstract6-8
中英文对照表8-11
引言11-12
1 文献综述12-21

1.1 Ceopn-3 的结构组成12-13

1.2 Cepon-3 的在不同肌组织中的表达及作用13-16

1.2.1 Cepon-3 在骨骼肌中的表达13-14

1.2.2 Cepon-3 在心肌中的表达14-15

1.2.3. Ceopn-3 与平滑肌15-16

1.3 Ceopn-3 的作用机制16-18

1.3.1 Ceopn-3 与 Ca+的释放及通路调节16-17

1.3.2 Ceopn-3 与 NO、NOS 的联系17-18

1.4 耐力训练对细胞内信号分子通路的影响18-19

1.

4.1 对 Ca~(2论文导读：

+)等信号分子变化的影响18

1.4.2 对损伤指标 CK、LDH 的变化影响18-19

1.5 环孢霉素 A 引起细胞损伤对细胞代谢功能的影响19-20

1.6 小结20-21

2 实验材料与策略21-26

2.1 实验对象21

2.2 训练模型21

2.3 取材与处理21

2.4 主要仪器与试剂21-22

2.4.1 主要的仪器21-22

2.4.2 主要的试剂22

2.5 指标的测试与策略22-25

2.5.1 细胞内游离钙的测定22-23

2.5.2 组织 NO 的测定23

2.5.3 组织 TNOS 活性的测定23

2.5.4 血清 CK 的测定23

2.5.5 血清和组织 LDH 的测定23

2.5.6 免疫组化法测定 Ceopn-323-25

2.6 数理统计25-26

3 实验结果26-31

3.1 CsA 与耐力运动干预下细胞内游离钙的测试结果26

3.2 CsA 与耐力运动干预下组织中 NO 测试结果26

3.3 CsA 与耐力运动干预下组织中 TNOS 的测试结果26-27

3.4 CsA 与耐力运动干预下血清 CK 测试结果27

3.5 CsA 与耐力运动干预下 LDH 测试结果27-28

3.6 免疫组化结果28-31

4 浅析与讨论31-35

4.1 大鼠细胞内游离钙测试结果的讨论31-32

4.2 大鼠细胞内 NOS,NO 测试结果的讨论32

4.3 Ceopn-3 测试结果的讨论32-34

4.4 CK、LDH 结果的讨论34-35

结论35-36
参考文献36-40
致谢40